DNA methylation · research design guide

어느 해상도로
메틸레이션을 볼 것인가

EPIC array와 WGBS는 같은 methylome을 서로 다른 해상도로 읽습니다. 결과 예시입니다.

EPIC array · ~935K CpGWGBS · ~28M CpGOneOmics · research support
01

CpG의 상태를 읽는 기술

DNA 서열 자체를 바꾸지 않고도 유전자 조절 상태가 달라질 수 있습니다. 대표적인 표지가 사이토신에 붙는 메틸기입니다.

MOLECULAR PRINCIPLE

5-methylcytosine · 5mC

CpG dinucleotide의 사이토신 5번 탄소에 –CH₃가 붙어 5mC가 됩니다. 프로모터 CpG island, enhancer, gene body 등의 메틸화 상태는 전사 조절과 연동될 수 있습니다.

β = M / (M + U + α)   ·   0 = unmethylated, 1 = fully methylated
HOW WE READ

Bisulfite chemistry와 두 판독 경로

Bisulfite 처리 후 비메틸화 C는 U로 바뀌어 시퀀싱에서 T로 읽히고, 5mC는 C로 남습니다. EPIC은 프로브의 형광 신호로, WGBS는 C/T 비율로 methylation level을 계산합니다.

🧪

Bisulfite

C → U/T
5mC → C

▦

EPIC

probe signal
β value

📖

WGBS

C/T counts
per CpG

반드시 구분할 것: conventional bisulfite 방법에서는 5mC와 5hmC를 구분하지 못합니다. 5hmC가 중요하면 oxBS-seq, TAB-seq, EM-seq와 같은 별도 접근을 검토해야 하며, bisulfite는 DNA fragmentation과 mapping bias를 유발할 수 있습니다.

근거: Huang et al. (2010), Illumina Infinium Methylation documentation, NEB bisulfite sequencing notes.

02

왜 메틸레이션을 연구하는가?

유전형이 비교적 고정된 정보라면, methylome은 조직·시간·환경과 함께 변하는 조절 층위입니다.

01 · GENE REGULATION

서열은 그대로, 활성 상태가 변한다

프로모터 CpG island hypermethylation은 전사 억제와 연결될 수 있으며, enhancer·gene body의 변화는 조직 특이 발현, splicing, X-inactivation, imprinting 등과 관련됩니다.

02 · ENVIRONMENT & AGING

삶의 흔적과 생물학적 나이

흡연, 식이, 스트레스, 화학물질 노출, 노화는 재현 가능한 CpG 패턴을 남길 수 있습니다. 이 패턴을 이용해 epigenetic clock과 노화 연구를 설계합니다.

03 · DISEASE & BIOMARKER

질병 관련 molecular signature

암·대사·자가면역 연구에서 질병군과 대조군의 DMP·DMR을 비교할 수 있습니다. cfDNA methylation, 조직 기원 추정, 후보 biomarker 탐색으로 확장됩니다.

04 · INTERPRETATION RULE

연관, 발현, 인과를 분리한다

  • methylation association ≠ causation
  • methylation ≠ gene expression
  • 조직·세포 조성 변화가 신호의 원인일 수 있음
  • RNA-seq·단백질·기능 실험으로 추가 검증 필요

근거: Horvath & Raj (2018) epigenetic clock theory, Titus et al. (2017) cell-type deconvolution.

03

좋은 결과는 설계에서 시작된다

메틸레이션 연구의 해석력은 분석 알고리즘만이 아니라 검체, 비교 설계, 공변량, batch 관리에서 결정됩니다.

SAMPLE

검체 유형

  • Fresh/frozen tissue: WGBS·EPIC에 이상적
  • Whole blood/PBMC: 접근성이 높지만 cell deconvolution 필요
  • FFPE: fragmentation·crosslinking 주의, EPIC restoration 고려
  • cfDNA·saliva: low-input과 세포 조성 고려
DESIGN

어떤 비교인가?

  • Case–control: 질병군과 대조군 매칭
  • Longitudinal: 동일 개체의 시간 변화
  • Tissue comparison: 정상·병변 또는 조직 간 비교
  • Pooled screening → 독립 validation
CONFOUNDERS

무엇 때문인지 분리

  • cell composition
  • batch·chip position·sequencing run
  • 성별·연령·흡연·음주·약물
  • tumor purity·DNA 품질·conversion rate
  • multiple testing·FDR
실험 설계 원칙: 모든 샘플을 같은 방식으로 처리하고, 실험 순서를 섞어 특정 그룹이 한 번에 처리되지 않게 합니다. 또한 성별·연령·세포 비율·실험 batch를 분석에 함께 넣어야 그룹 차이를 더 정확하게 판단할 수 있습니다.

추천 분석 도구: minfi, SeSAMe, Houseman/EpiDISH, RUV, ComBat, SVA. 모든 도구는 연구 설계와 데이터 품질에 맞춰 선택합니다.

04

EPIC array · 표적 프로브 기반 genome-wide 지도

미리 정해진 CpG probe를 대량 병렬 판독해 재현성 있는 β value, DMP, DMR을 얻습니다.

WHAT IT MEASURES

~935K CpG의 β 값

Infinium I/II probe가 methylated/unmethylated 신호를 형광으로 측정합니다. 프로모터, enhancer, gene body 등 연구 관심 영역을 균형 있게 커버합니다.

🧬

DNA

gDNA

🧪

Bisulfite

conversion

▦

BeadChip

probe signal

📊

IDAT

β matrix

BIOINFORMATICS

IDAT → QC → DMP/DMR → pathway

  • QC: detection p, bead count, sex prediction, cross-reactive probe 제거
  • Normalization: Noob, SWAN, funnorm 등
  • DMP: limma linear model + covariates
  • DMR: bumphunter, DMRcate, comb-p
  • 해석: missMethyl, GO/KEGG/Reactome
예시 input
≥250 ng
권장 500 ng · 프로토콜 의존
예시 throughput
8 samples / chip
EPICv2 표준 예시
주요 한계
probe-bound
비표적 CpG는 직접 측정하지 않음
EPIC이 적합한 경우: 많은 샘플의 EWAS, cohort screening, FFPE archive study, 표준화된 biomarker 후보 탐색. EPIC은 미리 정해진 위치를 빠르게 비교하는 방법이므로, 모든 DNA 위치를 확인하는 것은 아닙니다.

근거: Illumina EPIC v2 product page, Illumina Knowledge Base 000002679, Peters et al. (2024), Kaur et al. (2023), minfi Bioconductor.

05

WGBS · 염기 수준의 whole-genome methylome

프로브가 정해지지 않은 전체 유전체를 읽어 전 CpG와 비-CpG, 새로운 영역까지 탐색합니다.

WHAT IT MEASURES

~28M CpG · single-base resolution

각 CpG에서 methylation level을 C reads / (C+T reads)로 계산합니다. CpH, imprinting, allele-specific methylation, enhancer 등도 분석 범위에 포함될 수 있습니다.

🧬

HMW gDNA

고품질 DNA

✂️

Library

fragmentation

📖

PE150

bisulfite reads

🧭

CpG call

methylation map

BIOINFORMATICS

FASTQ → methylation call → DMR

  • Trim: adapter·bisulfite 특이 편향 정리
  • Map: Bismark, BSMAP, gemBS
  • Calling: MethylDackel, methylKit
  • QC: lambda conversion, duplication, uniformity
  • DMR: DSS, dmrseq, BSmooth
  • Annotation: gene·enhancer·chromatin state
예시 input
10–100 ng
HMW gDNA · kit/protocol 의존
사람 genome 예시
≥30×
유효 CpG depth 확보 목적
주요 부담
FASTQ/BAM
시퀀싱·저장·계산 자원 증가
WGBS가 적합한 경우: 새로운 methylated region, 비-CpG methylation, imprinting, allele-specific signal, probe 밖의 영역까지 발견하고 싶은 연구. 높은 해상도로 분석하려면 더 많은 데이터를 생산해야 하고, 많은 위치를 비교하는 과정에서 통계적으로 우연히 보이는 결과가 없는지 확인해야 합니다.

근거: ENCODE MethylC-Seq Standards, Ziller et al. (2015), Zymo-Seq WGBS kit protocol D5465, Bismark/methylKit documentation.

06

EPIC vs WGBS · 한 표로 선택하기

같은 methylome을 다른 해상도로 봅니다. 발견·범위·샘플 수·예산·검체 품질을 함께 고려하세요.

항목EPIC arrayWGBS
읽는 대상표적 probe가 있는 CpG, 약 935K전체 gDNA의 CpG, 약 28M
해상도probe 단위 β valuesingle-base methylation level
입력 예시≥250 ng, 권장 500 ng10–100 ng HMW gDNA 예시
대표 데이터IDAT, β matrix, DMP/DMRFASTQ/BAM, CpG calls, DMR
강점대규모 EWAS, 표준화, 재현성, 비교적 낮은 부담프로브 밖 영역, CpH, imprinting, allele-specific 탐색
한계비타깃 CpG 미측정, probe·batch 편향, 5mC/5hmC 미구분높은 depth·비용, DNA 손상, mapping bias, 5mC/5hmC 미구분
우선 고려많은 샘플의 screening·EWAS·FFPE archive발견 연구·새 영역·고해상도 methylome
QUESTION A

많은 샘플·재현성

EPIC v2.0으로 cohort를 스크리닝하고, 후보 DMR을 별도 방법으로 검증합니다.

QUESTION B

새 영역·높은 해상도

WGBS로 enhancer, CpH, imprinting, allele-specific methylation까지 탐색합니다.

QUESTION C

발견 → 검증

EPIC screening → WGBS 또는 targeted BS-seq → RNA·단백질·기능 검증으로 연결합니다.

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